Молекулярная биотехнология. Принципы и применение - Глик Б., Пастернак Дж. 2002

Молекулярная биотехнология микробиологических систем
Генная инженерия растений: методология
Применение репортерных генов при трансформации клеток растений

Для идентификации трансформированных клеток необходимо уметь обнаруживать чужеродную ДНК, интегрировавшую в геномную ДНК растения. Более того, при исследовании сигналов регуляции транскрипции и их функций в специфических растительных тканях (листьях, корнях или цветках) зачастую важно уметь количественно оценивать уровень экспрессии гена, кодирующего легко идентифицируемый продукт. Все это требует применения репортерных генов, которые позволяют либо проводить отбор трансформированных клеток, либо оценивать активность кодируемого ими фермента. Было протестировано несколько разных генов, которые можно использовать как доминантные селективные маркеры, и генов, чей белковый продукт можно обнаружить с помощью специфических методов (табл. 17.4). Поскольку многие из репортерных генов имеют бактериальное происхождение, они были снабжены регуляторными последовательностями, обеспечивающими их экспрессию в растительных клетках. Проводя отбор по доминантному маркеру, можно получить культуру, содержащую только трансформированные клетки. Так, в присутствии канаминина выживают только клетки растений, синтезирующих активную неомицинфосфотрансферазу. Выбор того или иного репортерного гена диктуется характером конкретного эксперимента. Если экспрессия гена мешает нормальному росту растения, то его нельзя использовать как репортерный. Кроме того, по мнению экспертов-биотехнологов, присутствие некоторых генов и их продуктов может приводить к загрязнению коммерческого продукта. В связи с этим лучше не вводить гены устойчивости к антибиотикам в сельскохозяйственные растения.

Таблица 17.4. Системы репортерных и селективных маркерных генов растительных клеток1)

Фермент

Использование в качестве селективного маркерного гена

Использование в качестве репортерного гена

Неомицинфосфотрансфераза

Да

Да

Гигромицинфосфотрансфераза

Да

Да

Дигидрофолатредуктаза

Да

Да

Хлорамфеникол-ацетилтрансфераза

Да

Да

Гентамицин-ацетилтрансфераза

Да

Да

Нопалинсинтаза

Нет

Да

Октопинсинтаза

Нет

Да

ß Глюкуронидаза

Нет

Да

Стрептомицинфосфотрансфераза

Да

Да

Фермент, обусловливающий устойчивость к блеомицину

Да

Нет

Люцифераза светляка

Нет

Да

Бактериальная люцифераза

Нет

Да

Треониндегидратаза

Да

Да

Металлотионеин ІI

Да

Да

енол-Пирувилшикимат-3-фосфатсинтаза

Да

Нет

Фосфинотрицин-ацетилтрансфераза

Да

Да

ß-Галактозидаза

Нет

Да

Бластицидин S—дезаминаза

Да

Да

Ацетолактатсинтаза

Да

Нет

Бромоксинилнитрилаза

Да

Нет

1) Из работ Walden, Schell, Eur. J. Biochem. 192: 563—576; Gruber, Crosby, p. 80—119, in B. R. Glick, J. E. Thompson (ed.), Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology, CRC Press, Boca Raton, Fla.

Некоторые продукты ре портерных генов (например, ß-D-глюкуронидазу, а также люциферазу, синтезируемую бактериями и светляками) можно обнаружить в интактных растительных тканях. В системах трансформации чаще всего используется ген ß-D-глюкуронидазы Е. coli (GUS-ген). Он кодирует стабильный фермент, обычно отсутствующий в растениях, который катализирует расщепление ß-D-глюкуронидов. Его активность в трансформированных растительных тканях можно обнаружить по появлению синей окраски в результате гидролиза неокрашенного субстрата, 5-бром-4-хлор-3-индолил-β-D-глюкуроновой кислоты. Альтернативный, более чувствительный метод количественной оценки активности GUS-генов в растительных экстрактах основан на определении интенсивности флуоресценции продукта гидролиза 4-метилумбеллиферил-β-В-глюкуронида.